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神經元高清直播:自適三光子顯微鏡解鎖大腦深境_abio生物試劑品牌網

abiopp7個月前 (06-06)技術50
在探索大腦奧秘的征程中,成像技術始終是科學家的“眼睛”。2021年,歐洲分子生物實驗室(EMBL)的Robert Prevedel團隊在《Nature Methods》發表重磅研究,開發出基于 三光子激發(3PM) 間接自適應光學(AO) 心電圖門控(ECG gating)的微創活體成像技術 ,首次實現小鼠大腦 1.4毫米深度的近衍射極限成像 ,清晰解析深層神經元突觸、樹突及星形膠質細胞的鈣信號動態。這項技術如同“光學手術刀”,剝開組織散射與運動偽影的重重迷霧,為揭秘大腦深部神經環路開啟了新維度。

論文全稱:
High-resolution structural and functional deep brAIn imaging using adaptive optics three-photon microscopy

作者:

Lina Streich, Juan Carlos Boffi, Ling Wang等

發表期刊:Nature Methods

發表時間:2021年9月30日

重要發現
01三光子激發:突破組織散射的“光學鑰匙”
傳統雙光子顯微鏡(2PM)受限于表層離焦熒光干擾,在哺乳動物大腦中的成像深度僅約1毫米。三光子顯微鏡(3PM)通過長波長激發(1300nm)和非線性三光子吸收效應,顯著降低背景噪聲,將有效成像深度拓展至1.4毫米(小鼠海馬CA1區邊緣)。其核心優勢包括:

高信號背景比(SBR):在深層組織中,3PM的SBR比2PM提升數倍,例如在皮層下900微米處可分辨單個突觸結構(直徑約0.5微米)。

低光損傷特性:通過優化激光參數(<50fs脈沖寬度、0.5–22mW平均功率),焦點能量控制在<2nJ,低于組織損傷閾值,可實現長時間活體觀測而不引發光毒性。

02 電間接自適應光學:校正像差的“智能濾鏡”
  深層組織的折射率不均與散射會導致激發光聚焦失準,傳統AO技術在低信噪比環境中效率低下。該研究開發的模態-based無傳感器AO方法,通過連續膜變形鏡(DM)調制澤尼克(Zernike)模式(如Z21、Z35),逐模態優化波前,在深層腦組織中實現近衍射極限分辨率。

抗噪能力:即使在SBR極低的深層區域(如海馬>1毫米處),AO仍能通過神經元胞體信號完成像差校正,信號增強達8倍,軸向分辨率提升4倍。

大視場校正:軸向校正范圍覆蓋數百微米,允許在離優化點較遠的區域(如不同皮層層或海馬深層)維持高分辨率,無需依賴侵入性梯度折射率透鏡。

實驗顯示,AO校正后,皮層下900微米的突觸棘突和海馬1.4毫米處的樹突精細結構均清晰可辨,空間頻率分布恢復至理論衍射極限的90%以上。

03心電圖門控:凍結生理運動的“時間快門”
心臟搏動引發的腦組織微位移是深層成像的另一難題。研究團隊通過FPGA實時同步掃描與心電圖R波,在心跳峰值期間暫停成像,將幀間運動偽影降低60%,幀間相關性從0.94提升至0.98。

非侵入性優勢:無需植入傳感器或復雜后期處理,僅通過外部電極采集心電信號,適用于長期植入窗口的自由活動動物。

深度適用性:在海馬>1毫米深度,ECG門控使樹突成像的信噪比(SNR)提升3倍,允許通過幀平均進一步增強信號,而傳統非門控方法因偽影重疊無法實現。

04 膠質細胞功能成像:解鎖神經調控的“暗箱”
星形膠質細胞在神經信號傳遞、代謝支持中起關鍵作用,但其深部功能因成像困難長期成謎。借助3PM-AO-ECG技術,研究團隊首次在活體中實現深層星形膠質細胞鈣信號的單細胞分辨率觀測:

白質纖維性星形膠質細胞:在胼胝體(深度862微米)觀測到微域鈣瞬變,盡管缺乏典型突觸接觸,仍表現出與神經元活動相關的功能性信號。

皮層深層原生質星形膠質細胞:在皮層V-VI層(深度835微米),AO校正后檢測到的鈣活性微域數量增加50%,揭示其對局部神經環路的動態調控潛力。

創新與亮點
01技術協同突破三大瓶頸

深度限制 :超越2PM的“1毫米壁壘”,首次在完整大腦中實現1.4毫米深度的亞細胞分辨率成像,覆蓋皮層全層、海馬及部分丘腦結構。

像差校正:傳統AO在深層低信號環境中效率不足,而模態-based AO通過全局波前調制,在信噪比比1還低的條件下仍能收斂,校正速度<500毫秒/模態。

運動偽影:ECG門控相比傳統事后校正更高效,掃描占空比僅降低40–60%,遠優于主動運動補償技術的復雜性。

02 非侵入性與多功能拓展
微創優勢 :無需植入透鏡或抽吸皮層,僅通過慢性玻璃窗口即可實現長期成像,適用于發育神經學、神經修復等慢性研究。
多模態兼容 :除熒光成像外,還可結合三次諧波生成(THG)進行無標記組織對比,適用于透明化腦樣本或骨骼等非生物組織成像。

03科學價值:從神經元到膠質細胞的解析
該技術首次在活體中清晰呈現深層神經元突觸可塑性(如皮層棘突動態變化)和膠質細胞功能異質性,為研究神經退行性疾病(如阿爾茨海默病的海馬突觸丟失)、脫髓鞘病變等提供了關鍵工具。例如,通過AO校正,可在海馬CA1區觀測到單個樹突棘的鈣信號,而傳統方法因像差模糊無法分辨。

總結與展望
三光子顯微鏡與自適應光學、心電門控的結合,標志著活體深層成像技術進入新紀元。其1.4毫米的穿透深度、亞微米級分辨率及非侵入性特性,使科學家得以窺視大腦“無人區”的神經活動細節,從神經元突觸到膠質細胞微域,全方位解析腦功能的細胞基礎。

未來,該技術有望通過波前整形技術與三光子的結合(如同時校正散射與像差),進一步提升成像深度至2毫米以上;微型化探頭的開發則可能實現自由活動動物的全腦實時成像。從基礎神經科學到臨床前研究,這項“光學革命”正推動我們向“解碼大腦”的終極目標邁出關鍵一步——或許在不久的將來,人類能借助這雙“光學慧眼”,真正揭開意識、記憶與疾病的神秘面紗。

論文信息
聲明:本文僅用作學術目的。
Streich L, Boffi JC, Wang L, Alhalaseh K, Barbieri M, Rehm R, Deivasigamani S, Gross CT, Agarwal A, Prevedel R. High-resolution structural and functional deep brain imaging using adaptive optics three-photon microscopy. Nat Methods. 2021 Oct;18(10):1253-1258.

DOI:10.1038/s41592-021-01257-6.

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