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PCR反應(yīng)控制涉及的主要方面總結(jié)_abio生物試劑品牌網(wǎng)

abiopp6個月前 (07-10)技術(shù)48
聚合酶鏈式反應(yīng)(Polymerase ChAIn Reaction, PCR)是一種用于在體外擴增特定DNA片段的分子生物學(xué)技術(shù)。該技術(shù)通過模擬DNA的自然復(fù)制過程,利用耐熱的DNA聚合酶和人工合成的引物,對目標(biāo)DNA序列進行指數(shù)級的復(fù)制。PCR由三個基本步驟組成:變性(高溫使雙鏈DNA解離成單鏈)、退火(引物與單鏈模板DNA結(jié)合)和延伸(聚合酶合成新的DNA鏈)。這一循環(huán)重復(fù)25-30次,每次循環(huán)都能使目標(biāo)DNA片段的數(shù)量翻倍,從而在幾小時內(nèi)將微量DNA擴增至數(shù)百萬倍。PCR技術(shù)因其高靈敏度、特異性和簡便性,在基因分析、遺傳病診斷、法醫(yī)鑒定、病原體檢測等領(lǐng)域得到廣泛應(yīng)用。
 
PCR反應(yīng)的控制涉及多個關(guān)鍵參數(shù)和步驟,以確保反應(yīng)的特異性、效率和產(chǎn)量。以下是PCR反應(yīng)控制的主要方面:
 
1. 反應(yīng)緩沖液
  • pH值:提供適宜的酸堿度,通常為8.3。
  • 離子濃度:如KCl和MgCl2,Mg2+的濃度對反應(yīng)特異性及產(chǎn)量影響顯著,通常為1.52mM。
  • dNTPs:脫氧核苷三磷酸底物,終濃度為50400μM,且四種dNTP的濃度應(yīng)相同。
 
2. 酶
Taq DNA聚合酶:耐高溫,能在70℃下保持活性,但對過高溫度敏感。在每個循環(huán)的退火步驟中不需要重新添加。
 
3. 引物
設(shè)計原則:
  • 長度:1530bp,常用20bp。
  • G+C含量:4060%為宜。
  • 避免5個以上嘌呤或嘧啶的連續(xù)排列。
  • 避免引物內(nèi)部及引物間互補序列。
  • 引物3’端應(yīng)與模板嚴格配對,特別是末尾的G和C。
 
4. 反應(yīng)溫度和時間
  • 變性:95℃,通常30s,使雙鏈DNA解離。
  • 退火:55℃左右,根據(jù)引物Tm值調(diào)整,一般低于Tm值5℃,時間12min。
  • 延伸:72℃,時間取決于片段長度,約1min/kb。
 
5. 循環(huán)次數(shù)

一般為2535次,循環(huán)數(shù)過多會導(dǎo)致“平臺期”,產(chǎn)物量不再顯著增加。
 
6. 反應(yīng)體系
  • 模板DNA:初始濃度影響循環(huán)數(shù),低濃度需增加循環(huán)數(shù)。
  • 引物:濃度一般為0.10.5μM。
  • Taq酶:通常24U/μl。
  • MgCl2:與dNTPs濃度平衡,過高或過低都影響反應(yīng)。
 
7. 產(chǎn)物分析
  • 凝膠電泳:用于檢測產(chǎn)物條帶,確保特異性擴增。
  • 陰性對照:防止污染,確保結(jié)果可靠性。
 
8. 問題解決
  • 產(chǎn)物量少:增加模板量、循環(huán)數(shù)、引物量,延長延伸時間。
  • 產(chǎn)物多條帶:優(yōu)化退火溫度,減少循環(huán)數(shù),調(diào)整引物或酶量。
  • 產(chǎn)物條帶不符:檢查引物、模板、污染。
 
9. 特殊條件
  • 實時熒光定量PCR (qPCR):監(jiān)測反應(yīng)過程中產(chǎn)物的實時生成量。
  • 數(shù)字PCR (dPCR):通過物理隔離實現(xiàn)高靈敏度和絕對定量。
 
10. 操作注意事項
  • 無污染:使用全新的試劑和槍頭,清潔工作臺。
  • 溫度控制:確保pcr儀準確控制各階段溫度。
  • 模板純化:去除抑制劑,確保模板質(zhì)量。
 
通過精確控制這些參數(shù),可以實現(xiàn)高效、特異的PCR擴增,滿足不同實驗需求。

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